ОПРЕДЕЛЕНИЕ ПОТРЕБЛЕНИЯ КИСЛОРОДА
Для определения потребления кислорода почвенными беспозвоночными используются главным образом разнообразные модификации классических объемных методов; применяются приборы, конструкция которых основана на принципах открытой и дифференциальной манометрии (Dixon, 1941; Кожанчиков, 1961; Умбрейт и др , 1951).
Следует напомнить, что объемные методы измерения потребления кислорода рассчитаны на то, что в процессе участвуют только два газа- потребляемый кислород и выдыхаемый углекислый газ.Потребление кислорода у одиночных особей или групп особей чаще всего измеряется манометрическим методом по Варбургу или Баркрофту в различных модификациях. Схемы устройства респирометров на основе открытой (/) и дифференциальной (2) манометрии предстрвлены на рис. 1. При открытой манометрии (аппарат Варбурга) система зависит от температуры и атмосферного давления. Контрольные манометры (без животного в респирационном сосудике) позволяют вносить поправку, связанную с изменением температуры и атмосферного давления в период измерения дыхания. При дифференциальной манометрии наличие компенсирующего сосудика (к) делает систему независимой от колебаний температуры и атмосферного давления во время измерений. Это преимущество дифференциальной манометрии успешно используется при конструировании респирометров.
Порядок работы с манометрическими приборами состоит в следующем. В стаканчики для поглотителя СО2 (п) помещают
138
Рис. І. Схема устройства манометрических респирометров и типы респира- ционных сосудов, удобных для работы с воздушнодышащими беспозвоночными
Z — манометр Варбурга, открытая манометрия; 2 — дифференциальный респирометр Баркрофта; 3 — типы респирационных сосудоа
о — респврацноиный, к — компенсирующий сосуды; я — манометрическая жидкость; о — нулевая отметка; л — стаканчик для поглотителя СО» (полоски фильтровальной Бумаги, опущенной в 5—20%-иый раствор щелочи)
Рис.
2. Схема устройства поплавкового микрореспирометра (Klekowski, 1971) 1 — сосуд с флотационной жидкостью, 2 — сосуд с воздухом; 3, 4— краны; S, 6 — шцрн- цы для грубой и тонкой регулировки уровня жидкости в мДнометрё, 7 — поплавок, я — раствор щелочи; б — минеральное масло; а — флотационная жидкостьраствор щелочи (5—20%) и полоски фильтровальной бумаги. В респифационный сосудик помещают влажную фильтровальную бумагу й животное, в контрольные, или компенсирующие, сосуды— только фильтровальную бумагу. Если животное выделяет при этом секрет пахучих желез, необходимо воздух в сосудике сменить, осторожно отсасывая его с помощью груши. Сосудики прикрепляют к манометрам при открытых кранах (кр). Штативы с манометрами укрепляют затем на водяной бане и оставляют для выравнивания температуры и давления при открытых кранах на 15—20 мин. После термостатирования устанавливают манометрическую жидкость на нулевой точке и закрывают кра- ' ны. Отсчет времени измерения ведется с момента закрытия кра-
139
нов. Через определенный отрезок времени в случае открытой ма- нометрий уровень манометрической жидкости в соединенной с респирационным сосудиком ветви манометра устанавливают (при закрытом кране) на нулевой точке и записывают показания открытой ветви манометра. При дифференциальной манометрии в конце периода определения потребления кислорода записывают показания обеих ветвей манометра.
Объем пптпебленного кислорода определяется по формуле:
где k — константа сосудика (цена деления манометра), h — в случае открытой манометрии высота столба манометрической жидкости (в мм) над нулевой точкой в открытой ветви манометра или при дифференциальной манометрии — разность между уровнем жидкости в обеих вепрях манометра.
Методы определения константы сосудов описаны в ряде руководств (Мешкова, Северин, 1950; Кожанчиков, 1961). Однако при работе с объектами разного размера достаточно знать объем газового пространства сосуда и затем рассчитывать константу для конкретных условий.
Объем газового пространства сосуда определяется по объему (весу) дистиллированной воды, которая вмещается в сосудик, прикрепленный к манометру, и в верхнюю часть трубки манометра до нулевой отметки. Константа рассчитывается по (Ьпимуле:
где Vg — объем газового пространства; К — суммарный объем добавок (объем щелочи и животного), t — температура, при которой проводится измерение. При этом возможно составление номограммы констант для данного объема газового пространства в зависимости от температуры и объема добавок.
Для измерения дыхания простейших, нематод, микроартропод, яиц беспозвоночных применяется поплавковый микрореспирометр, или картезианский поплавок (Holter, 1943; Zeuthen, 1950). В отечественной литературе модель поплавкового респи- ррметра и принцип работы с ним описаны А. П. Щербаковым (1940). На рис. 2 показана схема устройства прибора, которая неоднократно видоизменялась в деталях в связи с характером объектов и целями исследования. Поплавок (рис. 2, 7) изображен р рабочем состоянии: на дно помещено животное, в шейку поплавка на «определенном уровне введена капля щелочи-поглотителя СОа (о), нейтрального масла (б), а оставшаяся часть трубочки заполнена флотационной жидкостью (б). Поплавок опускается во флотационную камеру. Камера и сосуд с запасом воздуха помещаются в водяную баню. Положение поплавка регистрируется визуально с помощью увеличительной оптики. Объем
140
потребленного кислорода определяется по формуле.
273
273 +1 ’
где Vg — объем газового пространства поплавка; Р— изменение давления за период отсчета (в мм водяного столба), равное разнице показаний обеих ветвей манометра; Ро — нормальное давление, равное 10000 мм водяного столба; t — температура измерения. Объем Газового пространства поплавка может быть определен по объему (весу) дистиллированной воды, заполняющей поплавок до определенной метки, около которой при измерениях помещается капля щелочи, или другими указанными в руководствах методами.
Манометрический метод регистрации движения поплавка может быть заменен электромагнитным (Brzin, Zeuthen, 1964; Oman, Brzin,1971). Схема устройства электромагнитного микрореспирометра приведена на рис. 3. Изменение плавучести дыхательной камерки (рис, 3, 6} компенсируется контролируемым изменением магнитного поля, воздействующего на магнитный поплавок (5). На этой схеме изображен картезианский поплавок, который применяют для работы с водными животными. Для воз- душнодышащих беспозвоночных он должен быть соответствующим образом изменен (см. рис. 2).
Для измерения дыхания мелких объектов, например яиц насекомых, Тафт (Tuft, 1950) предложил оригинальный микрореспирометр, который по точности измерения близок к картезианскому поплавку, однако имеет в сравнении с ним преимущества. В основу конструкции респирометра положен принцип дифференциальной манометрии (рис. 4), что делает систему независимой от температуры и атмосферного давления. Объем и устройство дыхательной (рйс. 4, 1) и компенсирующей (2) камер можно изменять. В оригинальном описании указан объем 50—100 мм3. Камеры соединены капиллярным манометром (рис. 4, 4). Респирометр помещен в водяную баню. При потреблении кислорода в респирационной камере уровень жидкости в манометре смещается по отношению к нулевой отметке. С помощью, пипетки, заполненной ртутыб (6) и соединенной с микрометром, положение жидкости восстанавливают. Объем потребленного кислорода при этом равен показанию микрометра, умноженному на цену одного деления (в единицах объема), которая определяется предварительной калибровкой прибора. Прибор при относительно большом объеме рабочей камеры позволяет улавливать вменение объема газа, равное 0,01 мм3. Разработана схема автоматического устройства для выравнивания давления и регистрации изменения объема воздуха в дыхательной камере, однако прибор может быть вполне использован и при ручном управлении. Относительно большой запас воздуха в камере позволяет 141
Рис.
3. Схема устройства электромагнитного поплавкового микрореспирометра (Owan,Brzin, 1971)
1 — флотационный сосуд, укрепленный на пластинке из оргстекла — 2, 3 — двухходо- вый манипулятор для перемещения пластинки с прибором; 4 — кварцевая нить, поддерживающая респира- ционный и магнитный поплавки; 5 — магнитный поплавок; 6 ~ респирационный поплавок, 7 — сосуд с воздухом, 8 — кран-отводка для насыщения флотационной жидкости воздухом, 9 — кран для выравнивания давления воздушной фазы и для присоединения манометра при калибровке прибора; І0 — электрическая схема; к — катушки электромагнита. И — магнитный поплавок (магнит в стеклянной или пластиковой ампуле)
РЙс. 4. Схема дифференциального мнкрйреспи- рометра (Tuft, 1950)
t — респирацнонная; г — компенсирующая камеры; 3 —краны; 4 — манометр с манометрической жидкостью 5 — нулевая отметка; 6 — мииропипетка с ртутью, 7 — резервуар с ртутью; в — металлический стержень, соединенный с микрометром
проводить длительные измерения без опасения создать в камере дефицит кислорода.
В настоящее время при измерении дыхания воздушнодыша- щих беспозвоночных получают все большее распространение приборы с электролитической компенсацией убыли кислорода в дыхательной камере (Winteringham, 1959; Macfadyen, 1961; Бызов и др., 1967; Бызова, 1971; Dunkle, Strong, 1972). Преимущество этого метода перед всеми перечисленными очевидно *. Здесь устранен недостаток манометрического метода, состоящий в снижении концентрации кислорода в камере в течение опыта. В респирометрах с кислородным генератором животное в течение всего периода измерения дыхания находится в условиях заданного постоянного напряжения кислорода. Большинство из имеющихся моделей таких респирометров позволяет проводить длительные измерения. Объем потребленного кислорода определяется, в зависимости от конструкции прибора, либо по уравнению электролиза, либо по числу стандартных порций кислорода, выделенных генератором за определенный отрезок времени.
Макфедьен (Macfadyen, 1961) подробно рассмотрел все предложенные к тому времени варианты и возможные принципы устройства респирометров с электролитической компенсацией убыли кислорода и показал, что надежность их работы во многом зависит от типа датчика, управляющего электролитической ячейкой. Надежнее в работе те приборы, в которых, как и в последней модели прибора Макфедьена (Macfadyen, 1961), кислородный генератор и управляющий его включением датчик разобщены. Кроме того, можно отметить, что удобнее те приборы, в которых кислород выделяется дозированно. Две таких модели приводятся в данной статье. На рис. 5 изображена схема микрореспирометра, предназначенногб для измерения потребления кислорода мелкими членистоногими (клещи, ногохвостки, яйца насекомых и т. д.) весом до 10 мкг (Dunkle, Strong, 1972). Животное Помещают в стеклянном или пластиковом контейнере (1) в дыхательную камеру (2). При открытых кранах (5) прибор приготавливают к работе: закрывают шлифом (5) респираци- онную камеру и вместе с крышкой (4) вставляют в малый сосуд, после чего кран этого сосуда закрывают. Все вместе вставляют в большой сосуд, помещенный в водяную баню. Кран большого сосуда после периода термостатировайия закрывают и проводят измерения.Компенсация убыли кислорода создает преимущество этого прибора перед поплавковым микрореспирометром. Пре'имущест-
1 Вудлеид (Woodland, 1973) показал, однако, что при длительном измерении дыхания у крупных животных в респирометре иакапЛйКаетеи значительн’о'е количество озона, оказывающего токсическое действие’на- животных. -В-качестве вещества, обезвреживающею озон, пригоден , нцкель-ди-п бутялди- тнокарбамат.
м
Рис. 5. Схема микрореспиро- метра с электролитической компенсацией убыли кислорода (Dunkle, Strong, 1972)
1 — контейнер для животного; 2 — дыхательная камера, 3 — капилляр с внутренним диаметром 2 мм; 4 — резиновые пробки; 5 — краны для выравнивания давления; 6 — шприц а — стеклянная вата; б — поглотитель СОг (комочки -натронной извести); в — іватй; г — сеточка; Pt — платиновый электрод; Си — медный электрод; CuSO4—насыщенный раствор медного купороса
во обсуждаемой модели состоит и в том, что кислород при включении генератора выделяется стандартными порциями. Однако в приборе датчиком служит замыкание цепи Pt—CuSO4, что, как показал Макфедьен, нежелательно из-за поляризации платинового электрода. Кроме того, как и при открытой манометрии, точность измерения зависит от строгости термостатирования. Этот недостаток может быть устранен, если респирационную камеру переконструировать по типу компенсирующих сосудов (см. «Дифференциальную манометрию» в настоящей статье). Еще один недостаток прибора, а именно сложная система герметизации, может быть легко устранен путем замены резиновых пробок пришлифованными крышками.
Как уже говорилось, использование принципа дифференциальной манометрии может практически снять проблему строгого термостатирования. В этом случае достаточным оказывается грубое термостатирование с точностью в пределах одного градуса, т. е. только такое, которое исключает биологическое влияние изменений температуры на газообмен. На этом принципе основана конструкция респирометра с электролитической компенсацией убыли кислорода для измерения дыхания различных наземных и почвенных беспозвоночных (Бызов и др., 1967; Бызова, 1971). На рис. 6 приведено устройство респирометра (А) и элект-
144
рических схем управления: автоматической (Б) и ручной (В). Точность измерения не зависит от атмосферного давления, так как использована схема компенсирующих сосудов, а также и от температуры, поскольку дыхательная и компенсирующая камеры выточены в едином медном или латунном блоке, выравнивающем в них температуру. Респирометр помещается в теплоизолирующую оболочку (при работе с комнатной температурой) или в специальный воздушно-водный термостат с циркулирующей в двойной стенке водой. Через кислородный генератор пропускаются импульсы тока длительностью 0,12 сек., благодаря чему кислород вырабатывается стандартными порциями. Объем порции кислорода может быть рассчитан по уравнению электролиза, а также определен объемным методом. Для этого в капиллярный ход крышки рабочей камеры (к) герметически закрепляется мик-
Рис. 6. Устройство дифференциального респирометра с электролитической компенсацией убыли кислорода (Л) и электрические схемы управления кислородным генератором: Б — автоматическая и В — ручная (Бызов и др., 1967; Бызова, 1971)
I — медный илн латунный блок; 2 — рабочая, 3 — компенсирующая камеры; 4 — капиллярный манометр с каплей легкоподвижной жидкости; 5 —сосуды для поглотителя СОг; 6 — кислородный генератор с раствором CuSO, и платиновым электродом Pt; 7 — крышка из оргстекла; 8 — винты, прикрепляющие крышку к блоку, поверхность которого смазана вакуумной смазкой; 9 — капиллярные ходы для выравнивания давлення; 10 — покровные стекла, закрывающие капиллярные ходы (на вакуумной смазке); II— осветитель
ФД— фотодиод ФД-3; Э — эксцентрик на осн синхронного мотора; С — счетчнк включений кислородного генератора
145
ропипетка, соединенная со шприцем с микроподачей и заполненная дистиллированной водой. Оттягивание с помощью шприца воды из микропипетки имитирует снижение давления в рабочей камере, которое происходит при потреблении кислорода. Снижение давления затем компенсируется работой кислородного генератора. Таким образом несколько раз определяется объем кислорода, выделившегося при 50—100 включениях электролитической ячейки, откуда и рассчитывается объем единовременной порции кислорода. В сочетании с ручной схемой управлення генератором (В) прибор может работать при разном напряжении в сети. Для этого электролитическая ячейка должна быть откалибрована при разных напряжениях. В данной схеме объем порции кислорода при 120 в составляет 0,24 мм3, при 190 в — 0,45 мм3. Применение в качестве источников питания анодных батарей большой емкости или аккумуляторов позволяет использовать прибор в полевых условиях. Подготовка прибора к работе состоит в следующем. Электролитические ячейки (б) в рабочей (2) и компенсирующей (5) камерах заполняются равным количеством насыщенного раствора медного купороса. В тефлоновые стаканчики (5) на. дне камер наливают раствор щелочи. На второе дно из оргстекла кладут кусочки влажной фильтровальной бумаги, затем в рабочую камеру помещают животное. При открытых капиллярных ходах (5) крышка (7) привинчивается к блоку, поверхность которого покрывается вакуумной смазкой. Прибор термостатируется 5—10 мин. Капля жидкости Ів капилляре-манометре (4) устанавливается у средней метки. Это можно сделать, слегка надавливая поочередно на капиллярные ходы крыш-' ки. Затем оба хода одновременно закрываются скользящими на вакуумной смазке покровными стеклами. С этого момента ведется отсчет времени измерения потребления кислорода. Объем потребленного кислорода равен объему единовременной порции кислорода, умноженной на количество включений генератора за определенный период.
Во всех перечисленных методах и приборах измерение потребления кислорода, как уже говорилось, возможно лишь при полном удалении углекислого газа из дыхательной камеры. Животные при измерении потребления кислорода находятся в неестественных условиях. Особенно это касается почвенных беспозвоночных, для которых содержание 0,3% СО» в почвенном воздухе— обычные условия существования, а колебания концентрации СО2 в почве могут зачастую иметь амплитуду в 1—2 порядка величин (Бызова, 1968).
Использование буферных растворов в качестве поглотителя CO2 (Warburg, 1919; Pardee, 1949; Krebs, 1951) позволяет поддерживать в дыхательной камере некоторую .небольшую концентрацию углекислого газа. Для создания в камере небольшого напряжения СО2 — от 0,03 до 0,86% Варбург предложил буферный раствор, состоящий из смеси равных количеств карбоната и
146
бикарбоната натрий или калия соответствующих концентраций (Warburg, 1919):
Более высокую концентрацию СО2 в рабочей камере — до 3—4%' можно создавать, используя в качестве буфера диэтаноламин в чйстом виде или в смеси с другими веществами (Pardee, 1949; Krebs, 1951). Однако чистый диэтаноламин сам поглощает кислород, поэтому требуются добавки, подавляющие процесс окисления. Для этой цели применяется 0,1%-ный раствор тио- мочевийы. Одна из таких буферных смесей имеет следующий состав: 10 мл 60%-ного раствора диэтаноламина, 3 г КНСО3, 6NHC1 в количестве, необходимом для создания той или иной концентрации СО2 при 38° (рис. 7), доливают дистиллированной водой до 15 мл. Затем 0,6 мл этой буферной смеси наливают в стаканчик для поглотителя СО2 с фильтровальной бумагой *.
Изучение влияния более высокйх концентраций СО» на дыхание почвенных беспозвоночных возможно е помощью газовой хроматографии, инфракрасного и других газовых анализаторов. Однако эти методы требуют специальной сложной аппаратуры. В сравнении с ними кажется более простым метод полярографии в газовых смесях, который стал возможен после созданий мембранных электродов (Sawyer, George, Rhodes, 1959), хотя и не нашел пока широкого применения в изучении дыхания беспозвоночных. Метод основан на измерении сопротивления платинового электрода в электролите, отделенном от газового пространства мембраной; проницаемой для кислорода (подробно см. Йса- акйн, 1Ш)- При напряжении 0,6 в на платиновом электроде величина Фона, зависящего, от сопротивлений контакта'платний —. электролит, пропорциональна концентрации кислорода в гайовбй 1 смеси дыхательной камеры.
Применение в качестве электролита агарового мостика — раствора электролита, приготовленного на агаре, дает возможность обходиться без мембраны. На рис. 8 приведена схема лабораторной полярографической установки, примененной для определения
Буферные смеси Варбурга и Парде —Кребса рассчитаны для температуры , 25 н 38°„ соответственно". Для работы с почвенными беспозвоночными необ-.. ходимо рассчитать буферные смеси, которые позволяли бы поддерживать те же концентрации СОг (от 0,3 до 3—4% СО2) при температуре от 0 до 20’.. ' - ... . • • - А л
147-
потребления кислорода почвенными беспозвоночными в присутствии СО2 (Бызова, Бызов, 1973). Электролитическую ячейку в этой установке составляют каломельный (/) и платиновый (2) электроды, а электролитом служит 20%-ный раствор хлористого калия, приготовленный на агаре (агаровый
Рис. 7. Концентрация СО2 в воздушной фазе респирацион- ного сосуда в зависимости от концентрации раствора в центральном стаканчике (Pardee, 1949)
На абсциссе — количество 6NHC1 (в мл), иа ординате —»концентрация СОг в газовой фазе (в %)
мостик, 3). Устройство каломельного электрода (Мешкова, Северин, 1950) подробно приведено на рис. 8. Платиновый электрод представляет собой платиновую проволоку диаметром 0,4 мм с изолирующим покрытием, оголенную на протяжении 3—4 мм от конца. Проволока закреплена в прямоугольно изогнутой трубке, один конец которой воронкообразно расширен, а другой имеет на наружной поверхности шлиф. Трубка заполняется горячим раствором хлористый калий — агар до расширенной части. После затвердения агарового мостика расширенная часть трубки заполняется раствором хлористого калия. Выступающий конец платиновой проволоки в неглубоком желобке из тефлона также заливают агаровым раствором электролита. Трубка с помощью шлифа соединяется с измерительной камерой (4) объемом около 1 см3, куда набирают пробу газовой смеси для анализа.
В отличие от схем, рекомендуемых для лабораторных полярографических установок (Исаакян, 1964), в данном случае применена мостовая схема, которая позволяет освободиться от постоянной составляющей электрического тока и таким рбразом использовать наибольшую чувствительность измерительного прибора Измерительным прибором в этой схеме служит милливольтамперметр М-95 с чувствительностью 1-Ю-9 ампера. Измерение концентрации О2 в дыхательной камере производится одномоментно в конце опыта. Это исключает влияние на результаты измерения дрейфа нулевой линии, который неизбежен прй высокой чувствительности установки.
Дыхательной камерой служит шприц, соединенный с измерительной камерой через трехходовый кран. Через этот же кран с
148
измерительной камерой соединяется шприц с контрольной газовой смесью для калибрбвки электрода. В рабочем состоянии электрод находится в равновесии с атмосферным напряжением кислорода. Газовые смеси получают разбавлением воздуха в шприцах чистым азотом или углекислым газом в определенных пропорциях Точность измерения с помощью такой установки не зависит от колебания температуры, поэтому термостатирование необходимо лишь в той мере, в какой этого требует задача исследования.
Для изучения газообмена в присутствии СО2 у почвенных животных, способных дышать в воде, могут быть исйользованы электролитические ячейки с закрытыми электродами (Камлюк,
Рис. 8. Схема полярографической установки для определения потребления кислорода почвенными беспозвоночными (Бызова, Бызов, 1973)
А — электролитическая ячейка и ресйврометр; Б — электрическая схема
/•-каломельный электрод, 2 —платиновый электрод, 3 —агаровые мостики, Ч — измерительная камера с отводком (а) для смены газа в ней; S — дыхательная камера с сеткой (б), 6 — шприц с контрольной газовой смесью, 7 — трехходовый край, 8 — измерительный прибор
149
1967; O’Connor, 1970), полярографическая ячейка, предложенная для измерения дыхания нематод (Marks, Sorensen, 1971).
Определению кислорода объемными методами могут мешать различные летучие вещества, выделяемые животными. В литературе (Бызова, 1972) накопилось много данных о том, что почвенные животные выделяют, кроме секрета пахучих желез, аммиак, амины, жирные кислоты, которые не поглощаются щелочью и, оставаясь в воздухе Дыхательной камеры, маскируют истинную скорость газообмена. Например, нематоды, моллюски, дождевые черви, мокрицы, многоножки и, возможно, ногохвостки выделяют аммиак, количество которого возрастает при голодании. Во всех этих случаях при изучении газообмена манометрическими методами в дыхательную камеру следует помещать специальный поглотитель летучих выделений, например красный лакмус — против аммиака. В тех случаях, когда природа летучего вещестйа, а следовательно и поглотитель неизвестны, или поглотитель сам может испаряться, объемные методы неприменимы. Здесь могут быть использованы только такие методы, которые основаны на анализе газового состава воздуха в дыхательной камере: это, например, газовый анализатор Сколендера (Scholander, 1942), приборы с использованием газовых анализаторов (Hamilton, 1959; Bolton, 1970), газовая хроматография (Wood, Wood, Dickinson, 1970), полярографические установки.